3D生物打印組織移植物在再生醫學中具有廣闊前景，但其臨床轉化面臨兩大核心挑戰：一是植入后引發的異物反應（FBR），導致纖維包膜形成和炎癥持續，阻礙移植物與宿主組織整合；二是血管化不足，造成移植物缺氧和功能障礙。研究表明，生物材料的剛度會誘導巨噬細胞向促炎的M1表型極化，加劇FBR，而傳統細胞療法存在存活難、倫理風險及成本高等問題。    
      為解決上述難題，中國人民解放軍總醫院的付小兵院士、杜曉輝主任和黃沙教授開發了一種基于M2巨噬細胞源細胞外囊泡模擬物（M2-EVMs）的創新策略。團隊通過膜擠壓技術制備了M2-EVMs，將其作為生物墨水添加劑融入3D打印支架中，利用M2-EVMs抑制M1極化、促進M2極化及血管生成的特性，減輕FBR并增強組織再生能力。在皮下植入和皮膚傷口模型中，搭載M2-EVMs的3D打印支架顯著減少了纖維包膜厚度，提升了血管密度和傷口愈合效率，展現出良好的生物相容性和再生效果。    
       相關工作以“Bioprinted M2 macrophage-derived extracellular vesicle mimics attenuate foreign body reaction and enhance vascularized tissue regeneration”為題發表在《Biofabrication》上。
 

研究內容
1. 3D生物打印支架剛度對異物反應的影響，通過皮下植入不同剛度的3D生物打印支架，結合H&E染色、免疫熒光及轉錄組測序，研究支架剛度與異物反應（FBR）及巨噬細胞極化的關系。結果表明，硬支架（Young’s模量0.285 MPa）顯著誘導M1巨噬細胞極化（CD86+比例達80%），纖維包膜厚度（164.7±44.2 µm）是軟支架的3倍，且促炎基因（如IL-6、TLR4）顯著上調，證實剛度通過加劇M1極化惡化FBR。      
 

2. M2巨噬細胞源細胞外囊泡模擬物（M2-EVMs）的制備與表征，利用膜擠壓技術結合超聲破碎和梯度離心，制備了M1/M2-EVMs，并通過HR-TEM、NTA及蛋白質印跡分析其結構和成分。結果顯示，M2-EVMs呈圓形囊泡結構（粒徑約100 nm），高表達M2標記蛋白（如CD206、Arg1），低表達促炎蛋白（如TLR4），且能被成纖維細胞、內皮細胞和巨噬細胞有效攝取（6 h內攝取率>70%）。      
 

3. M2-EVMs對體外細胞行為的調控作用，通過劃痕實驗、管形成實驗及RT-qPCR，研究了M2-EVMs對成纖維細胞、內皮細胞及巨噬細胞的功能影響。結果表明，M2-EVMs顯著抑制成纖維細胞活化（α-SMA表達降低50%）和遷移，促進內皮細胞血管生成（管形成數量增加80%），并誘導巨噬細胞向M2表型極化（CD206+比例從10%升至45%），而M1-EVMs作用相反。      
 

4. 生物墨水特性與EVMs釋放行為，通過流變學測試、SEM及釋放曲線分析，研究了含EVMs的明膠-海藻酸鹽水凝膠墨水的打印適性和釋放特性。結果表明，EVMs添加未顯著改變墨水的剪切變稀特性（黏度≈1000 mPa·s）和機械性能（Shore A硬度18.8-19.1°），且能在72 h內持續釋放（累積釋放率≈80%），均勻分布于支架孔隙中。      

5. 含M2-EVMs的3D生物打印支架的體內性能評估，通過皮下植入和全層皮膚傷口模型，結合H&E染色、Masson染色及免疫熒光，研究了M2-EVMs對FBR和組織再生的影響。結果顯示，搭載M2-EVMs的硬支架纖維包膜厚度僅26.7±7.6 µm（較對照組降低58%），血管密度增加3倍，傷口愈合率提升40%，并促進毛囊和血管再生，而M1-EVMs組炎癥反應加劇。      
 

研究結論
本研究開發了一種基于M2巨噬細胞源細胞外囊泡模擬物（M2-EVMs）的3D生物打印策略，以解決3D打印組織移植物的異物反應（FBR）和血管化不足問題。通過膜擠壓技術制備的M2-EVMs可抑制巨噬細胞向促炎M1表型極化，促進血管生成相關因子分泌，并有效被成纖維細胞、內皮細胞攝取。將其作為生物墨水添加劑融入明膠-海藻酸鹽支架后，未顯著改變墨水的機械性能和打印適性，且能持續釋放（72 h累積釋放率≈80%）。體內實驗表明，搭載M2-EVMs的支架可使纖維包膜厚度降低58%，血管密度增加3倍，顯著促進皮膚傷口的上皮化、毛囊再生及血管形成。本研究證實M2-EVMs通過調控免疫微環境和促進血管化，顯著提升了3D打印組織的宿主整合能力，為解決生物材料植入后的炎癥和再生難題提供了新途徑。

文章來源：
https://doi.org/10.1088/1758-5090/add49f

(責任編輯：admin)

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